БІОХІМІЧНІ МАРКЕРИ МІНЕРАЛЬНОЇ ЩІЛЬНОСТІ КІСТКОВОЇ ТКАНИНИ У КРОВІ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИХ ТВАРИН ІЗ МОДЕЛЬОВАНИМ ОСТЕОПОРОЗОМ

В. М. Лучинський; Ю. І. Лучинська

doi:10.21802/artm.2025.2.34.38

Автор(и)

В. М. Лучинський Тернопільський національний медичний університет імені І.Я. Горбачевського Міністерства охорони здоров’я України, кафедра стоматології ФПО, м. Тернопіль, Україна https://orcid.org/0000-0002-9339-2589
Ю. І. Лучинська Тернопільський національний медичний університет імені І.Я. Горбачевського Міністерства охорони здоров’я України, кафедра дитячої стоматології, м. Тернопіль, Україна https://orcid.org/0000-0001-8622-7334

DOI:

https://doi.org/10.21802/artm.2025.2.34.38

Ключові слова:

пародонт, кісткова тканина, кістковий метаболізм, остеопороз

Анотація

Одним із найважливіших компонентів доказової медицини є проведення експериментальних досліджень на тваринах. Це дозволяє виявити механізми розвитку захворювання, вплив ліків та їх токсичність.

Метою нашого дослідження євивчення змін біохімічних маркерів мінеральної щільності кісткової тканини у крові експериментальних тварин з індукованим остеопорозом при застосуванні різної остеотропної терапії. У нашому експериментальному дослідженні ми використовували 141 кролика для моделювання остеопорозу, індукованого глюкокортикоїдами.Остеотропна терапія проводилась розробленим нами комплексом, починаючи з 7 доби після закінчення моделювання остеопорозу. Тварин з модельованими остеопоротичними явищами ділили на групи залежно від застосування фармакологічних препаратів для репаративного остеогенезу: І група – інтактні; ІІ група – без корекції остеопоротичних явищ; ІІІ група – корекція остеопоротичних явищ препаратом «OsteoPro»; IVгрупа – корекція остеопорозу із застосовуванням препарату «Вітрум Остеомаг»; V група – отримували комплекс препаратів «OsteoPro»+«Вітрум Остеомаг». Досліджували метаболічні маркери в кістковій тканині, зокрема концентрації кальцію і фосфору, їх співвідношення (Ca/P), активності оксипроліну, лужної фосфатази, кислої фосфатази, їх співвідношення,а також колагенолітичну активність крові.

Результатами дослідження встановлено, що застосування препарату «ОстеоПро» та комбінації «ОстеоПро+Вітрум Остеомаг» у складі коригуючої терапії позитивно вплинуло на рівень біохімічних маркерів, пов’язаних із формуванням та розпадом кісткової тканини. Це проявилося в нормалізації вмісту кальцію і фосфору в крові та їх співвідношень, активності лужної та кислої фосфатаз, індексу мінералізації кісткової тканини, колагенолітичної активності крові, рівня оксипроліну. Ці поліпшення спостерігалися порівняно з даними здорових тварин першої групи та тварин із симуляцією остеопорозу, які не отримували остеотропну терапію.

Завантажити

Дані для завантаження поки недоступні.

Посилання

Chrcanovic BR, Albrektsson T, Wennerberg A. Dental implants inserted in male versus female patients: a systematic review and meta-analysis. Journal of Oral Rehabilitation. 2015; 42(9):709-722. Available from: https://doi.org/10.1111/joor.12308 DOI: https://doi.org/10.1111/joor.12308

Kern M, Behrendt C, Fritzer E, et al. 5-year randomized multicenter clinical trial on single dental implants placed in the midline of the edentulous mandible. Clinical Oral Implants Research. 2021; 32(2):212-221. Available from: https://doi.org/10.1111/clr.13692 DOI: https://doi.org/10.1111/clr.13692

Makeev V, Krupnyk A-S, Vares Ya, Krupnyk N. Dental implantation in prosthetic rehabilitation of dental arches small defects in adolescents. Suchasna stomatolohiia. 2017; 3:70-73. (In Ukrainian). Available from: http://nbuv.gov.ua/UJRN/ss_2017_3_17.

Prots HB. Biokhimichni markery kistkovoho remodeliuvannia v prohnozuvanni rezultativ dentalnoi implantatsii. Terapevtyka. 2021; 2(1):22-26. (In Ukrainian). Rezhym dostupu: https://doi.org/10.31793/2709-7404.2021.2-1.22 DOI: https://doi.org/10.31793/2709-7404.2021.2-1.22

Aydemir CA, Arısan V. Accuracy of dental implant placement via dynamic navigation or the freehand method: A split-mouth randomized controlled clinical trial. Clin Oral Implants Res. 2020; 31(3):255-263. DOI: https://doi.org/10.1111/clr.13563. Epub 2019 Dec 29. DOI: https://doi.org/10.1111/clr.13563

Leles CR, Dias DR, Nogueira TE, McKenna G, Schimmel M, Jordão LM. Impact of patient characteristics on edentulous subjects' preferences for prosthodontic rehabilitation with implants. Clinical Oral Implants Research. 2019; 30(3):285-292. Available from: https://doi.org/10.1111/clr.13414 DOI: https://doi.org/10.1111/clr.13414

Muller F, Al-Nawas B, Storelli S, et al. Small-diameter titanium grade IV and titanium-zirconium implants in edentulous mandibles: Ten-year results from a double-blind, randomised controlled split-mouth core-trial. Clinical Oral Implants Research. 2024; 35(1):77-88. Available from: https://doi.org/10.1111/clr.14199 DOI: https://doi.org/10.1111/clr.14199

Khaletska V, Komarytsia O. Modern technologies and methods of dental implant placement. Modern Medicine, Pharmacy and Psychological Health. 2024; 5(14):108-114. (In Ukrainian). Available from: https://doi.org/10.32689/2663-0672-2023-5-18 DOI: https://doi.org/10.32689/2663-0672-2023-5-18

Berglundh T, Armitage G, Araujo MG, et al. Peri-implant diseases and conditions: Consensus report of workgroup 4 of the 2017 world workshop on the classification of periodontal and peri-implant diseases and conditions. Journal of Clinical Periodontology. 2018; 45(Suppl 20):286-291. Available from: https://doi.org/10.1111/jcpe.12957 DOI: https://doi.org/10.1111/jcpe.12957

Chappuis V, Avila-Ortiz G, Araújo M G, et al. Medication-related dental implant failure: Systematic review and meta-analysis. Clinical Oral Implants Research. 2018; 29(Suppl 16):55-68. Available from: https://doi.org/10.1111/clr.13137 DOI: https://doi.org/10.1111/clr.13137

de Resende GP, Jordão LMR, de Souza JAC, et al. Single versus two-implant mandibular overdentures using early-loaded titanium-zirconium implants with hydrophilic surface and ball attachments: 1-year randomized clinical trial. Clinical Oral Implants Research. 2021; 32(3):359-368. Available from: https://doi.org/10.1111/clr.13707 DOI: https://doi.org/10.1111/clr.13707

Naseri R, Yaghini J, Feizi A. Levels of smoking and dental implants failure: A systematic review and meta-analysis. Journal of Clinical Periodontology. 2020; 47(4):518-528. Available from: https://doi.org/10.1111/jcpe.13257 DOI: https://doi.org/10.1111/jcpe.13257

Albeshri S, Alblaihess A, Niazy AA, Ramalingam S, Sundar C, Alghamdi HS. Biomarkers as Independent Predictors of Bone Regeneration around Biomaterials: A Systematic Review of Literature. J Contemp Dent Pract. 2018; 19(5):605-618. PMID: 29807974 DOI: https://doi.org/10.5005/jp-journals-10024-2306

Hodovana ОІ. Modern principles of etiology and pathogenesis of generalized dystrophic-inflam-matory periodontal diseases with concomitant systemic osteopenia. Visnyk problem biolohii i medytsyny. 2017; 1(137):35-41 (in Ukrainian). Available from: http://repository.pdmu.edu.ua/bitstream/123456789/11803/1/Hodovana_Modern_principles_of_etiology.pdf

Luchynskyi VM, Balaban TI, Luchynskyi MA, Luchynska YuI, Stakhanska OO, Zmarko YuK. Stan metabolizmu kistkovoi tkanyny u khvorykh iz zakhvoriuvanniamy tkanyn parodonta. Odeskyi medychnyi zhurnal. 2024; 2:30-34. (in Ukrainian). DOI: https://doi.org/10.32782/2226-2008-2024-1 DOI: https://doi.org/10.32782/2226-2008-2024-2-5

Shcherba V, Machogan V, Luchynskyi V, Korda M, Delibashvili D, Svanishvili N. Correlation between connective tissue metabolism and thyroid dysfunction in rats with periodontitis. Georgian Medical News. 2019; 297(12):145-149.

Halling Linder C, Ek-Rylander B, Krumpelet M, al. Bone Alkaline Phosphatase and Tartrate-Resistant Acid Phosphatase: Potential Co-regulators of Bone Mineralization. Calcif Tissue Int. 2017; 101(1):92-101. DOI: https://doi.org/10.1007/s00223-017-0259-2 DOI: https://doi.org/10.1007/s00223-017-0259-2

Zoch ML, Clemens TL, Riddle RC. New insights into the biology of osteocalcin. Bone. 2016;82:42-9. doi: https://doi.org/10.1016/j.bone.2015.05.046. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bone.2015.05.046

Hosseini S,Naderi-Manesh H, Vali H, Eslaminejad M, Sayahpour F, Sheibani S, Faghihi S. Contribution of osteocalcin-mimetic peptide enhances osteogenic activity and extracellular matrix mineralization of human osteoblast-like cells. Colloids Surf B Biointerfaces. 2019; 173:662-671. DOI: https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2018.10.035 DOI: https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2018.10.035

Kohli N, Ho S, Brown S, Sawadkar P, Sharma V, Snow M, García-Gareta E. Bone remodelling in vitro: Where are we headed?: A review on the current understanding of physiological bone remodelling and inflammation and the strategies for testing biomaterials in vitro. Bone. 2018; 110:38-46. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bone.2018.01.015 DOI: https://doi.org/10.1016/j.bone.2018.01.015